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人脐带间充质干细胞移植治疗大鼠深静脉血栓(2)
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摘要:1.4.3 分组及干预 按随机数字法将深静脉血栓模型大鼠20只随机分为4组:对照组、实验组1、实验组2及实验组3,每组5只。将培养至80%-90%融合的P3代人脐带间
1.4.3 分组及干预 按随机数字法将深静脉血栓模型大鼠20只随机分为4组:对照组、实验组1、实验组2及实验组3,每组5只。将培养至80%-90%融合的P3代人脐带间充质干细胞消化、计数,重悬于PBS中,制成2× 109 L-1浓度的细胞悬液,置于冰上备用。对照组:建模后第1,2,3天,尾静脉注射PBS 1 mL;实验组1:术后第1天,尾静脉注射脐带间充质干细胞悬液1 mL,第2,3天注射PBS 1 mL;实验组2:术后第1,2天尾静脉注射脐带间充质干细胞悬液1 mL,第3天注射PBS 1 mL;实验组3:术后第1,2,3天尾静脉注射脐带间充质干细胞悬液1 mL。整个实验过程中密关注射前后各组大鼠活力及状态。
1.4.4 标本取材 各组均于建模后第7天,按原切口再次进腹,并心脏取血(血标本离心取上清存于-80 ℃备用),暴露腹腔,阻断下腔静脉血栓近端、远端血流,取出该段含血栓的下腔静脉,取出后谨慎游离与之粘连的主动脉、周围结缔组织,注意勿将静脉管腔暴力撕拉损坏,剪去多余组织。置于40 g/L多聚甲醛固定12-24 h,梯度脱水,石蜡包埋,包埋时注意使管腔横截面为切面,5 μm连续切片,漂片及烤片。
1.4.5 苏木精-伊红染色 切片常规脱蜡、水化后,使用苏木精-伊红和染色试剂盒(Solarbio公司)内苏木精染色5 min,分化液分化30 s,自来水慢冲30 min,伊红染色30 s,梯度乙醇脱水,透明,中性树胶封固。将组织置于视野中央,采取40倍视野下图像,采用Image J图像分析系统分析图像。切片为血栓的横截面,按以下公式计算各组血栓溶解率:溶解率=[(静脉管腔面积-血栓面积)/静脉管腔面积]×100%。
1.4.6 CD34免疫组织化学染色 CD34是毛细血管内皮细胞表面抗原,并且其不在人脐带间充质干细胞中表达,可将血栓内小血管染成棕褐色。切片常规脱蜡、水化,置于抗原修复液中在微波炉中加热至沸腾,自然冷却至室温,PBS冲洗5 min×3次,阻断内源性过氧化物酶(通用二步法检测试剂盒,中杉金桥公司),滴加一抗(兔抗CD34抗体,Acbcam公司)室温孵育1 h,PBS冲洗5 min×3次,滴加反应增强液,室温下孵育20 min,PBS冲洗5 min×3次,滴加增强酶标二抗室温下孵育20 min,PBS冲洗5 min×3次,滴加新鲜配制的DAB显色液(DAB显色试剂盒,中杉金桥公司)室温孵育5 min,自来水冲洗5 min。苏木精复染15 s,流水冲洗,分化液中3 s,流水继续冲洗5 min。脱水,透明,封固。低倍镜视野下整体观察血栓内血管新生情况。取40倍视野左上、左下、右上及右下4个点分别转换成400倍视野计数该区域内新生血管数,采集各点区域时,管腔比作近似圆形,以视野对角线作为圆形直径,使得视野的顶点落在圆形的切点,以保证各次采集均为各血栓内相应的4个角落区域,将上述4个计数结果取平均值,计为该血栓的血管密度(个/400倍视野)。
1.5 主要观察指标 ①各组血栓内新生血管密度;②各组血栓的溶解率
1.6 统计学分析 采用SPSS 23.0软件进行统计分析。计量资料采用±s表示。组间数据差异比较采用单因素方差分析,两两比较采用Tukey-Kramer事后检验,以P < 0.05表示差异有显著性意义。
2 结果 Results
2.1 实验动物数量分析 对照组在术后第2天死亡1只,实验组1其中1只在注射干细胞时,出现注射完毕即反应差、随后呼吸心跳骤停的情况,考虑系该次注射前未混匀细胞悬液,细胞团造成大鼠肺栓塞,后每次注射细胞前均使用口径较大的吸管轻柔吹打、混匀,未再次出现此类情况。最终18只大鼠进入结果分析。
2.2 人脐带间充质干细胞培养结果及其形态学特点 培养三四天可见少量细胞从组织边缘爬出,多呈圆点状,见图2A;培养6 d进一步增多;培养8 d后见爬出明显增多,细胞由原来的圆状变成短棒状、有突起的长梭状,见图2B;培养13 d后细胞已有部分成片聚集,细胞多呈长梭状,偶扁平形的成纤维样细胞状,此时去掉组织块;培养16 d细胞浓度融合达80%-90%,低倍镜下见呈旋涡生长,见图2C。传代后细胞增长明显加快,P1代需每隔三四天换液1次,8 d后需1∶3传代。P2代细胞培养两三天即需换液,到第6天后需1∶4传代。若细胞浓度较低时常呈扁平样、多角样;若细胞浓度较高,趋于融合,常在低倍镜下呈旋涡状生长,高倍镜下可见细胞呈长梭形的成纤维细胞样。
2.3 苏木精-伊红染色结果及各组血栓溶解率的比较 苏木精-伊红染色切片40倍镜下可见,有核炎性细胞由周边向内部浸润,机化由血栓周边开始。对照组:偶在血栓与血管壁之间见少量溶解裂隙,血栓内基本无溶解,血栓基本充满管腔;实验组1:血栓与血管壁之间裂隙较对照组稍有增加,血栓内溶解仍有限;实验组2:血栓与血管壁之间以及血栓内溶解显著增加,较对照组及实验组1明显;实验组3:血栓周围及内部的溶解进一步增加,见图3。各组血栓溶解率:细胞移植组较对照组增加,实验组3大于实验组2大于实验组1,但差异无显著性意义(P=0.077),见表1。
文章来源:《湖北农机化》 网址: http://www.hbnjhzz.cn/qikandaodu/2020/1229/497.html
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